最新实验动物学心得体会(5篇)

在平日里，心中难免会有一些新的想法，往往会写一篇心得体会，从而不断地丰富我们的思想。那么你知道心得体会如何写吗？以下我给大家整理了一些优质的心得体会范文，希望对大家能够有所帮助。

实验动物学心得体会篇一

1 材料与方法

1.1 实验动物：sd大鼠24只，体重做任何处理;b组为实验组，将大鼠称重麻

200-290g，雌雄随意，由成都医学院实醉(用3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1ml的验动物中心提供。

量)后，找出一侧迷走神经，用手术剪剪断;1.2 实验药品与试剂：3.6%水合氯酸。

c组也为实验组，将大鼠称重麻醉(用3.6%1.3实验仪器与器械：电子天平，注射器，水合氯酸麻醉，按100g/1ml的量)后，找烧杯，手术器械(解剖刀，解剖盘，解剖出两侧的迷走神经剪断。手术处理后，观察剪刀，手术线眼科镊等)、滤纸，计时器大鼠有无呼吸频率改变、湿啰音、咳血、身等。

体抽搐等体征变化，0.5小时后处死所有大2 方法鼠。在解剖时，先结扎气管以免液体外溢，将实验动物随机分为3个组，a组b组c 然后将肺和心脏一同取出，剪去心脏和表面组各8只大鼠。a组为假手术组，将大鼠称的脂肪组织，并用滤纸吸干表面的液体，最重，麻醉(用3.6%水合氯酸麻醉，按后分别将各组大鼠肺称重，计算肺系数(肺100g/1ml的量)后，仅找出迷走神经，不系数=肺重量(g)/大鼠体重(kg))。

3 实验结果现象

在整个实验中，b组c组中各有一只大鼠在剪断迷走神经时不慎将颈总动脉剪断，导致大出血死亡，a组b组c组都没有出现湿啰音，也无咳嗽，鼻孔与口腔无粉红色泡沫样液体出现，也没有抽搐，整个试验期间大鼠都没有死亡。根据实验结果现象分析，并没有出现肺水肿。4结论与讨论

肺水肿是临床较为常见的综合病症，有很多的致病因素。由于对其发病机尚未完全阐明，因此，常常借助于一些动物模型进行发病机制和相关治疗的试验研究。结扎迷走神经是急性肺水肿动物模型是常用的一种动物模型。迷走神经支配呼吸、消化两个系统的绝大部分器官以及心脏的感觉、运动以及腺体的分泌。因此，迷走神经损伤可引起循环、消化和呼吸系统功能失调。在这次试验中，结扎迷走神经一段时间后，即可观察到b、c与a组对照出现的显著性差异，首先为大鼠的呼吸急促、紫绀;试验中观察到a组大鼠双肺呼吸音清晰，试验b、c两组大鼠双肺呼吸急促浑浊，并且有少许的红色粘液出现在鼻孔，显示试验组发生肺水肿，肺泡弥散功能严重降低;试验后解剖各组大鼠，对照组双肺饱满，呈粉红色，表面光滑，未见淤血，肺切面未见溢出粉红色液体。试验组肺体积明显增大、被膜光亮、湿润，表面呈现红褐色或暗紫色，可见片状淤血出血斑。目前，国内大量研究表面，肺重系数是一个衡量肺水肿比较好且准确的指标。

大鼠经过结扎迷走神经可以在短时间内诱导肺水肿的发生，并且通过检测几项指标都可以观察到明显的变化，效果较好。夹闭迷走神经来诱导大鼠肺水肿动物模型简单易操作实施，成本小，重复性高，可以作为临床上比较理想的肺水肿动物模型

#实验动物学心得4#

实验动物学心得体会篇二

实验动物学就这样匆匆结束了，总觉得时间过得很快，心里有种说不出的不舍。记得最初选修这门课的时候，心里很是没低，因为以前从来没有接触过动物实验，(由于专业的原因吧)虽然很想学，可又担心会跟不上其他同学，甚至会考试不过影响学位。不过最后还是选了，如果不学也许就永远不知道它其中所蕴含的乐趣和那种追求医学研究时所必须的严谨，现在想想当时的选择是多么的正确，，正是因为这次犹豫中的选择，让我爱上了这门课。记得第一次实验课是让学捕捉实验鼠，并做常用的给药方式，第一次抓到老鼠时的兴奋至今还难忘，这个实验还算简单，所以很顺利就做完了老师所要求的，同时也给了我很大的信心去学好这门课。以后每次试验课我都会早早的去，很用心的去记录老师讲的每个实验细节，直至最后一节课。有时候看到那些可爱的实验动物总不忍心去实施残忍，每当看到因为自己操作失误而致动物大出血，最后挣扎到死亡时，心中都有种莫名的难受。也有同学对我说既然选择去做实验就不能有怜悯，手要狠，我知道她说的是对的，可是我需要去慢慢的适应。后来我就笑着对同学说，如果不能避免残忍，那就让我们认真的去做好每个实验，合理的去利用每一个实验动物，在不影响实验结果的前提下最好一鼠多用，虽然最终都是要处死的，但至少死有所值吧。

随着对医学研究的不断深入，动物实验在医学、药学中的应用也会越来越广，它的重要性将会被更加重视。医学的发展历史告诉我们：有些问题单凭临床经验积累需要花费很长时间才能得到解决，或者虽花费很长时间，问题仍得不到解决，而通过动物实验有些问题就可以得到迅速解决。在我们追逐科研成果的同时，也一定不要忘记去适时的保护这些为我们做出了巨大贡献的动物，如果说，实验是为了更长远的社会利益，那几乎所有的医学科研成果是以无数动物的生命作为代价的，所以请让我们用仁慈的心去善待那些有生命的动物们吧。

通过学习这门课，最大的收获我觉得并不是学会了多少种实验的操作(当然这是最基本的要求)，而是通过实验更让我们受益的是它需要的这种执着，细心和认真严谨的态度，还有那种团队合作的精神。任何一个实验都是需要大家共同努力去完成，任何一个细节出了问题都会导致最终的失败，所以就要求我们去负责的对待每个环节，每一个步骤。只要把握好整个过程，就会顺利的达到预期的目的。

最后，更要感谢的就是这么多天来一直陪伴我们，不厌其烦、耐心教诲的所有实验室老师们，是你们不仅让我们学会了基本的实验操作，激起了我们对实验课的兴趣，更主要的是从你们身上让我们看到了对那种学术热爱、严谨的精神和为人师表的优秀风范，也许我们以后就不需要再做实验，也许这真的就是我们研究生生涯的最后实验课，但你们的精神和教诲会影响我们的一生

#实验动物学心得2#

实验动物学心得体会篇三

细胞生物学是研究细胞生命活动规律的一门科学， 细胞是生命的结构和功能单位，也是遗传和变异的单位。

有机体的一切病理现象都是细胞病理反应的结果，所以一切生命现象都可从细胞中得到解答。

现代分子生物学理论和技术的发展，科学家们开始在分子水平上逐步揭示细胞生命活动规律，并开始研究组织内和组织间细胞的相互关系和分子关联，这是现代细胞生物学的主要特点。

细胞生物学作为基础课，既有理论教学，又有实验教学，教学内容量大面广，对学生的知识、能力和素质具有直接和长远的影响。

教学内容要反映科学的发展，细胞生物学发展日新月异，新内容层出不穷。

因此，我们本着“实、宽、新、活”的原则，要求学生牢固掌握细胞的基本结构和功能及各细胞器间的关系的基本知识，并且能够掌握和了解细胞生物学的热点课题的现状和未来的发展趋势，包括生命信息流和细胞信息网络的研究、信号传递与细胞识别、蛋白质的加工、折叠与分选、发育的分子机制及遗传控制、细胞增殖、调控与编程死亡等。

《细胞生物学网络课程》集文字、图像、动画于一体，图文并茂。

既能作为本专科生的自学和教师教学使用、又能作为相关研究人员有价值的参考网络课程。

通过学习，掌握了课程的基本原理、内容体系、相关的研究手段以及细胞生物学在生命科学中的地位和应用，同时了解了相关的参考文献和网站，使自己既具有扎实的细胞生物学基础知识，又训练了获取知识的能力，从而使自己的综合素质进一步得到提高。

《细胞生物学网络课程》的总体教学模式是自主学习型。

通过大量的文本资料、图片、动画演示、多媒体辅助等手段为网上学习者展现细胞生物学的知识要点，通过多种表现手法，化解难点。

教学的重点体现在既兼顾基础，又注意与分子的衔接，重点是细胞器的结构体系和生物学功能。

从章节内容考虑，第四章(细胞膜与细胞表面)、第五章(细胞的信号传递部分)、第六章(细胞基质与细胞内膜系统)、第八章(细胞核与染色体)、第十章(细胞骨架)、第十一章(细胞增殖及其调控)、第十二章(细胞分化与基因表达调控)和第十三章(细胞凋亡部分)是细胞生物学的重点内容，同时也是难点，需要认真学习和掌握。

生理学是生物科学的分支学科之一。

是以生物机体的生命活动现象和生命活动规律及其机体各个组成部分的功能为研究对象，此外，研究内容还包括了生理功能为适应内外环境变化而进行的调节机制和规律。

由于生理学是研究生命活动规律的科学，因此本课程在要求学生掌握基本概念、基本理论的同时，更加强调对学生科学思维能力、分析和解决问题的能力的培养。

本课程主要包括:以细胞生理学为主的有关生理活动的一般规律;与生命活动调控有关的神经生理学、感觉器官生理学及内分泌生理学;血液循环生理学、呼吸生理学、消化生理学、代谢与体温调节、泌尿生理学、生殖生理学等。

该课程是以动物学、解剖学、细胞生物学、生物化学与分子生物学为基础，以此为基础，在功能这一层面揭示生命活动的规律。

生理学是从功能这一层面比较系统的揭示生命活动的规律，从知识来看，是以阐述生命活动规律为核心，重构生命科学知识体系。

因此，内容十分复杂，范围广，难度大。

学习生理学应该做到两个准确，两个灵活，坚持一个主题，一个基本原则。

即准确把握知识的框架体系，准确掌握和理解基本概念，灵活运用基本概念和理论进行思考，灵活思考各个主题内容，重新构建自己的知识体系。

整个生理学课程以兴奋性为主题，以稳态及其维持为基本原则。

全部内容按系统分章节，各章节之间是有联系的，先做到章节内知识的联系，后做到章节间的知识联系，系统地提出问题，分部深入学习理解，然后再进行系统的总结总之，学习的收获是非常丰富，它引发我更多的思考，也让我收获了很多的知识。

然而，憧憬未来，我知道前方的道路依然是曲折的，毕竟这些思考和理论需要我在今后的教学实践中不断的去尝试和运用，并最终将其转化为自身的东西，我想只有这样才算是真正达到培训的目的

#实验动物学心得3#

实验动物学心得体会篇四

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实验动物学心得体会篇五

本人之前从未接触过动物实验，实验室内也没有人做过动物实验，实验内容涉及小鼠灌胃，不知如何下手，内心有点慌，于是就从网上搜索视频开始学习。先买回来四只小鼠，想着练习基本的实验操作，本人之前连小鼠抓取都不太懂，虽然大学学习过，但几年没有接触还是手生的狠，这次就只好硬着头皮上了。好了废话不多说回归正题。

关于灌胃，小鼠的抓取很重要，右手抓住鼠尾，左手沿鼠背往上抓住颈背部皮毛，同时确保前肢皮毛也有部分抓取，这是为了固定小鼠前肢，防止注射时小鼠前肢抓握针头。抓取固定小鼠之后，取带有灌胃针的注射器，沿着小鼠右嘴角插入(因左手固定小鼠，所以沿右嘴角进针比较方便)，贴着小鼠上颌进针，然后再进针会遭遇抵触感，此时到达小鼠咽部，这时不要硬插针，稍微停一下，到达咽部后把针稍微挪动感觉放置咽喉中部，此时将注射器抬起与身体呈竖直的状态，再进针小鼠会有抵抗，但没有关系，顺着抵抗感慢慢进针，随后会有落空感，此时就表明针已进入小鼠胃中，注射药液，拔出针头即可。

希望对初做动物实验的小白有所帮助，这都是反复尝试摸索出来的，之前能灌进去胃都是偶然时间，搞得小鼠受折磨，我也难受，掌握一点技巧，小鼠也能少受罪

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